måndag 1 oktober 2012

Dag 4:Stringenstvätt samt detektion

Dag 4: En stringenstvätt och detektion gjordes slutligen dag 4.Dock kunde jag inte närvara pga sjukt barn men min laborationspartner Nathalie Eriksson utförde stegen för dag 4 och förpassade sedan resultatet till mig.

Syftet med stringenstvätt är att få bort prober som bundit ospecifikt.Prober som har bundit specifikt till dna:t i provet kommer att vara kvar då de sitter bättre pga bättre komplementär basparing.

För att detektera en hybridisering av proben till dess målsekvens så har proben märkts med antingen radioaktiva molekyler eller icke radioaktiva molekyler som tex fluorescens.I vårt fall använder vi oss av ett DIG-system som är icke radioaktivt.

Gelelektrofores:brunn 1-neg.kontr,brunn 7 PCR-prov,brunn 8-pos.kontr.



Efter hybridisering med probe.Brunn 1.neg.kontr,brunn 7-PCR-prov,brunn 8-pos.kontr

Det man kan konstatera från de båda bilderna är att vi fått smear i både brunn1 och 8 samt i 7 men dock visar brunn 7 som är vårt PCR-prov upp ett tydligt band vilket förhoppningsvis tyder på LL37.Att vi fått smear tyder på att vi fått ospecifik amplifiering av det som kommit ner i rören,primrarna har hybridiserat på flera ställen.

Nu har du gjort både PCR och Southern. Syftet med bägge metoderna var att ta reda på om LL 37-genen fanns i plasmiden. Jämför resultatet och diskutera för-och nackdelar med metoderna.
 
Metoden för Southern tar betydligt längre tid samt att det är fler steg än PCR vilket innebär
att det finns större risk att något går fel på vägen.Båda metoderna skulle jag säga är känsliga och kräver precision.
 
Vad tycker du är det viktigaste som du har lärt dig under laborationen?
 
Något av det viktigaste jag lärt mig är att noggrannhet är A och O när man jobbar med laborationer samt förberedelse och planering.Jobbar man med en medlaborant är det viktigt att man samarbetar och kompletterar varandra bra vilket var fallet här. 
 
 
 
 
 

måndag 24 september 2012

Dag 2:PCR samt elektrofores

Dag 2 gjordes först i ordningen en pcr.
Pcr görs för att amplifiera den klonade genen.
För att sedan kontrollera vårt dna görs en gelelektrofores som innebär att man separerar nukleinsyrorna.
Vi fyllde våra 6 brunnar med våra olika lösningar i denna ordning:pcr-prov,markör IX,plasmid,markör  III,positiv kontroll,negativ kontroll.Trots bra fyllning av brunnarna hände något på vägen,vilket varken vi eller lärarna kunnat reda ut.Det fanns inte ett spår av färg eller vandring i gelen.Resultatet fotades under uv-ljus.Man kan se spår av att en vandring av nukleinsyrorna har påbörjats men sedan har alltså något inträffat.Första fotot nedan är vårat resultat.


Fotot nedan är ett resultat på en lyckad gelelektrofores

 
Brunn 1:negativ kontroll
Brunn 4:Positiv kontroll 
Brunn 5:markör  III 
Brunn 6:  plasmid
Brunn 7:markör  IX  
Brunn 8:PCR prov 
 
PCR är inte helt perfekt då smear kan urskönjas,detta kan bero på kontaminering eller inte helt optimalt med primrarna. Dock visar resultatet en utmärkt plasmidprep och påvisningpå att LL37 genen finns i provet.
 
1.Blev resultatet bra eller dåligt?
Med tanke på att nåt hände och alla våra prover "försvann" mer eller mindre så kan jag ju inte påstå att resultatet blev särskilt bra.Varför detta skedde vet man som sagt inte orsaken till.

måndag 17 september 2012

Labbdag 1.Rening av rekombinant plasmid

Labbdag 1.Rening av rekombinant plasmid

På labbdag 1 gjordes en rening av rekombinant plasmid.från en bakteriesuspension. Detta gjordes genom ett flertal steg där buffertar som P1(innehållande RNase A), P2,N3,PB,PE och EB tillsattes och centrifugerades(dock var för sig). Stegen gjordes för att kunna utvinna plasmid DNA samt få bort RNA,kromosomalt DNA,celldebris och proteiner.

Därefter gjordes en renhet-och koncentrationsbestämning genom att mäta absorbansen i en spektrofotometer. Mängden UV-strålning som absorberas i lösningnen är direkt proportionell till mängden DNA i lösningen. Absorbansen mättes vid 260 nm samt 280 nm. För rent plasmid-DNA bör kvoten ligga på (A260/A280) 1,8 till 1,9(dock är en kvot mellan 1,6 till 2,0 helt ok.)
Vid 260nm uppnådes en absorbans på 0,058 och vid 280nm 0,032 (0,058/0,032) vilket ger oss en kvot på 1,81.
Även om kvoten är bra KAN det finnas andra nukleinsyror,ex kromosomalt DNA

260nm=50μg/ml dsDNA

Koncentrationen beräknades:
50x0,058=2,9μg/ml=0,0029μg/μl
0,0029x100(eftersom utspätt 100x)=0,29μg/μl
Konc för plasmid DNA=0,29μg/μl

1.Vilka föroreningar har du förhoppningsvis tagit bort?
Svar: Förhoppningsvis har vi fått bort RNA,kromosomalt DNA,proteiner och celldebris

2. Vad vet du om resultatet? Fick du ren plasmid?
Svar: Kvoten vi fick på 1,81 är bra och kan vara en indikation på att endast ren plasmid återstår,dock finns det andra nukleinsyror och proteiner som kan absorberas vid samma våglängd så det kan inte fastställas till 100%.

3. Är det något du funderar på till nästa laboration?
Svar:Nej